Ионизирующие излучение, в том числе от источников искусственного происхождения, относят в настоящее время к наиболее опасным неблагоприятным внешнесредовым влияниям на организм человека и высших животных. Это определяет неослабевающий интерес ученых к проблеме лучевого поражения. Особое значение данный вопрос приобритает вследствие беспрецедентных по количеству испытаний, произведенных на бывшем Семипалатинском ядерном полигоне. Как показали исследования, практически все территории бывшей Семипалатинской и Восточно-Казахстанской областей подверглись радиационному загрязнению, а Семипалатинский регион является одним из наиболее неблагоприятных регионов республики Казахстан.
Не последнее место занимает проблема ртутного загрязнения территории Казахстана: почво-грунтов, атмосферного воздуха, пойм и берегов рек. Согласно множественным исследованиям, среди химических факторов, загрязняющих окружающую среду, ртуть играет исключительную роль, благодаря способности образовывать в природе высокотоксичные органические соединения. Независимо от источника загрязнения ртутью большинство ее соединений в природе переходит в метилртуть [1]. Ртуть относится к числу ядов, обладающих способностью образовывать депо в различных органах, преимущественно паренхиматозных, а также в костях, откуда может поступать в кровь. Основной механизм повреждающего действия ртути на субклеточные структуры заключается в блокировании SH-групп [2].
Учитывая неблагоприятное состояние экологической обстановки в Казахстане, особый интерес представляет комплексное изучение действия ртути и радиации на органы и системы организма с целью выработки новых, эффективных способов детоксикации и повышения резистентности организма при хроническом и остром ртутном отравлениях и при сочетанном воздействии радиации и ртутной интоксикации. Кроме того, анализ последствий сочетанных воздействий на организм комплекса таких поражающих факторов, как ионизирующее излучение и ртутная интоксикация, является одной из наименее исследованных областей науки.
Известно, что на уровне клеток действует регуляторная система пуриновых нуклеотидов и их производных: аденозинтрифосфат (АТФ), АДФ (аденозиндифосфат), АМФ (аденозинмонофосфат), аденозин, инозин, компоненты которых выступают в роли универсальных внутриклеточных регуляторов как нервно-мышечной, секреторной и других физиологических функций, так энергетического обмена и иммунной системы. Установлено, что в основе клеточного и гуморального иммунитета лежат изменения активности ряда ферментов нуклеотидного обмена в различных субпопуляциях лимфоцитов [3]. Ферменты метаболизма пуриновых нуклеотидов аденозиндезаминаза (АДА), АМФ-дезаминаза (АМФ-ДА) и 5’-нуклеотидаза (5’-HT) являются универсальными внутриклеточными модуляторами, регулирующими функции различных клеток, в частности, лимфоцитов при стрессе [4].
Цель исследования
Целью исследования явилось изучение изменения иммунного статуса и активности ферментов метаболизма пуриновых нуклеотидов аденозиндезаминазы (АДА), АМФ-дезаминазы (АМФ-ДА) и 5’-нуклеотидазы (5’-НТ) в наиболее чувствительных тканях печени, почек и сыворотке крови.
Материалы и методы исследования
Исследования проведены на белых крысах, подвергшихся излучению (гамма-лучами Со-60 на радиотерапевтической установке ЛУЧ-1). Мощность дозы – 128 рентген в минуту с последующей ртутной интоксикацией в течение 3 суток после облучения. Количество животных в каждой серии («контроль», «облучение», «облучение + сулема») составляло 10 особей.
Через 3 недели после экспериментальных воздействий животных декапитировали и осуществляли забор биоматериала для исследования. Активность 5’-НТ в лимфоцитах определяли по скорости гидролиза АМФ до аденозина и фосфорной кислоты и выражали в количестве мкмоль H3PO4 на 1 мг белка. Активность АМФ-ДА и АДА определяли по скорости дезаминирования по методике, разработанной Тапбергеновым С.О. [5], и выражали в нмоль аммиака на мг белка.
Для оценки иммунологического статуса в периферической крови подсчитывали общее количество лейкоцитов и лимфоцитов. Количество Т-лимфоцитов преимущественно с хелперной (ТФУ-РОК) и супрессорной (ТФЧ-РОК) активностью определяли методом Limatyiul S., Shore A. et al. (1978) [6]. Количество Т- и В-лимфоцитов определяли розеткообразующими тестами (Jondal V. et al (1972) [7]). Количество популяции лимфоцитных клеток определяли с использованием стандартной методики подсчета Т- и В-лимфоцитов.
Результаты исследования и их обсуждение
Установлено, что при воздействии радиации в тканях печени и почек активность ферментов метаболизма пуриновых нуклеотидов повышается (табл. 1, 2).
Введение облученным животным раствора хлористой ртути (сулемы) из расчета 1 мг/кг приводит к снижению активности всех изучаемых ферментов обмена пуриновых нуклеотидов в тканях печени и почек относительно облученных животных (табл. 1, 2). Вероятно, сулема снижает активирующее действие радиации на изучаемые ферменты в ткани печени и почек.
Таблица 1
Изменение активности ферментов пуринового обмена в ткани печени при сочетанном воздействии радиации и ртутной интоксикации (мкмоль/мл)
|
Фермент
|
Группа животных
|
|
Контроль
|
Облучение 6 Гр
|
Облучение 6 Гр + сулема
|
|
|
5’-НТ
|
0,03 ± 0,001
|
0,11 ± 0,01*
|
0,079 ± 0,006**
|
p < 0,01
|
|
АДА
|
0,79 ± 0,013
|
5,19 ± 0,11*
|
0,53 ± 0,06**
|
p < 0,01
|
|
АМФ-ДА
|
0,52 ± 0,12
|
2,77 ± 0,09*
|
0,51 ± 0,09**
|
p < 0,01
|
Примечание. Здесь и далее * – различия статистически значимы в сравнении с контролем; ** – различия статистически значимы в сравнении с радиацией; р – для сравнения с радиацией.
Таблица 2
Изменение активности ферментов пуринового обмена в ткани почек при сочетанном воздействии радиации и ртутной интоксикации (мкмоль/мл)
|
Фермент
|
Группа животных
|
|
Контроль
|
Облучение 6 Гр
|
Облучение 6 Гр + сулема
|
|
|
5’-НТ
|
0,03 ± 0,001
|
0,12 ± 0,001*
|
0,03 ± 0,001**
|
p < 0,01
|
|
АДА
|
1,13 ± 0,02
|
7,87 ± 0,08*
|
0,80 ± 0,11**
|
p < 0,01
|
|
АМФ-ДА
|
0,73 ± 0,11
|
4,06 ± 0,09*
|
0,69 ± 0,12**
|
p < 0,01
|
Таблица 3
Изменение активности ферментов пуринового обмена в сыворотке крови при воздействии радиации и ртутной интоксикации (мкмоль/мл)
|
Фермент
|
Группа животных
|
|
Контроль
|
Облучение 6 Гр
|
Облучение 6 Гр + сулема
|
|
|
5’-НТ
|
6,73 ± 2,14
|
4,28 ± 1,73
|
4,82 ± 1,54
|
p < 0,01
|
|
АДА
|
22,36 ± 2,23
|
12,41 ± 2,81*
|
76,03 ± 1,14**
|
p < 0,01
|
|
АМФ-ДА
|
10,48 ± 2,31
|
4,51 ± 0,97*
|
49,34 ± 3,77**
|
p < 0,01
|
Таблица 4
Изменение иммунного статуса при сочетанном воздействии радиации и ртутной интоксикации
|
Показатель
|
Контроль
|
Облучение
6 Гр
|
Облучение 6 Гр + ртутная
интоксикация
|
|
Лейкоциты, общее число (109/л)
|
6,46 ± 0,55
|
8,14 ± 0,34*
|
8,24 ± 0,62
|
|
Лимфоциты, %
|
40,30 ± 3,60
|
55,53 ± 3,84*
|
70,20 ± 4,76**
|
|
Лимфоциты, абс. сод-е в 1 мкл
|
2800,04 ± 113,12
|
4056,44 ± 211,39*
|
5748,40 ± 500,02**
|
|
Т-лимфоциты, %
|
32,2 ± 2,02
|
19,22 ± 3,76*
|
26,80 ± 4,99**
|
|
Т-лимфоциты, абс. сод-е в 1 мкл
|
1457,21 ± 84,30
|
784,11 ± 209,23*
|
1618,92 ± 253,83**
|
|
Т-супрессоры, %
|
10,82 ± 0,67
|
5,22 ± 0,77*
|
11,80 ± 3,44**
|
|
Т-супрессоры, абс. сод-е в 1 мкл
|
488,43 ± 22,76
|
297,77 ± 63,06*
|
708,40 ± 234,30**
|
|
Т-хелперы, %
|
21,00 ± 1,90
|
11,00 ± 1,21*
|
15,00 ± 3,21
|
|
Т-хелперы, абс. сод-е в 1 мкл
|
698,00 ± 45,91
|
442,00 ± 123,96*
|
910,52 ± 283,68**
|
|
В-лимфоциты, %
|
7,0 ± 1,10
|
14,67 ± 1,71*
|
11,40 ± 2,87
|
|
В-лимфоциты, абс. сод-е в 1 мкл
|
318,42 ± 16,50
|
606,44 ± 83,47*
|
655,72 ± 182,65
|
В сыворотке крови воздействие радиации вызывает понижение активности ферментов пуринового ряда. После введения хлористой ртути имеет место повышение активности изучаемых ферментов, в особенности АДА и АМФ-ДА (табл. 3).
В следующей серии исследований изу чено состояние иммунного ответа при сочетанном воздействии радиации и ртутной интоксикации. Установлено, что после воздействия радиации отмечается изменение основных показателей системы клеточного и гуморального иммунитета. При облучении возрастает общее число лейкоцитов, лимфоцитов, В-лимфоцитов в том числе; снижается содержание Т-лимфоцитов и, в частности, Т-супрессоров и Т-хелперов (табл. 4).
Введение облученным животным хлористой ртути приводит к снижению относительного содержания В-лимфоцитов. В остальном, имеет место повышение показателей иммунного статуса.
Проводя сравнительный анализ эффектов разных изучаемых стрессорных факторов (радиация, ртутная интоксикация), нами установлены значительные сходства в механизме их действия на метаболизм и клеточные функции. Однако при ртутной интоксикации по сравнению с воздействием радиации имеет место снижение уровня В-лимфоцитов, что в какой-то мере объясняется особенностями эффектов ртутной интоксикации на систему иммунитета и ферменты метаболизма пуриновых нуклеотидов.
Тапбергеновым С.О. было показано участие адрено-тиреоидной системы в становлении адаптационного синдрома и возможности формирования синдрома адрено-тиреоидной недостаточности при разном типе стрессорных на организм воздействиях, в том числе и радиационном [8]. В определенной степени, обнаруженные нами различия эффектов действующих на организм стрессорных факторов можно объяснить разной степенью становления защитных механизмов и уровнем активности регуляторной функции адрено-тиреоидной системы.
Заключение
1. При радиационном стрессе имеет место повышение процента и абсолютного числа лимфоцитов, за счет увеличения числа В-лимфоцитов, снижается число Т-лимфоцитов и их субпопуляций – Т-хелперов и Т-супрессоров. В сыворотке крови снижается активность 5′-нуклеотидазы, аденозиндезаминазы, АМФ-дезаминазы.
2. При сочетанном воздействии радиации и ртутной интоксикации обнаружено изменение иммунного статуса. В сыворотке крови имеет место увеличение общего числа лейкоцитов и лимфоцитов относительно как контрольной, так и облученной групп животных; снижение количества относительного количества В-лимфоцитов относительно облученных животных. В сыворотке крови повышается активность изучаемых ферментов как относительно контроля, так и относительно облученных животных. В печени и почках резко снижается активность изучаемых ферментов.